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<publisher-name><![CDATA[Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad Austral de Chile]]></publisher-name>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de tres ambientes de transporte sobre el tiempo de aparición de la autólisis en muestras de alevines de trucha arcoíris (Oncorhynchus mykiss)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[El objetivo de este trabajo fue comparar el efecto de tres tipos de ambiente de transporte sobre el tiempo de aparición y progreso de los cambios autolíticos de muestras de alevines muertos, enviados para ser procesados para análisis histopatológico. Para ello se depositaron 300 cadáveres de alevines completos en tres ambientes de transporte: sumergidos agua a 4 °C, sumergidos agua a 15 °C y ambiente seco a 4 °C. Cada una hora, desde el tiempo cero hasta las 24 horas, grupos de 4 alevines por ambiente fueron fijados en formalina al 10% y procesados con la técnica histológica convencional de hematoxilina&eosina. En todos los grupos se determinó el tiempo de aparición de los cambios autolíticos en los distintos segmentos del riñón e hígado, clasificándose en cambios autolíticos tempranos, avanzados y autólisis completa. Se observó que los cambios autolíticos se evidencian primero en los hígados de los cadáveres a 4 °C en ambiente seco y al último en los cadáveres sumergidos en agua a 4 °C (1 y 6 horas, respectivamente). Respecto al riñón, los primeros cambios autolíticos se presentaron en cadáveres a 4 °C en ambiente seco y al último en los cadáveres sumergidos en agua a 4 °C (3 y 9 horas, respectivamente). De este estudio se concluye que de los tres ambientes de transporte comparados, el que conserva por más tiempo la estructura histológica y citológica de los tejidos de los peces para análisis histológico es la conservación sumergidos en agua a 4 °C, evidenciando el rol clave de la temperatura y humedad ambiental en el progreso de la autólisis de peces.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">      <p align="justify"><b><i>Arch Med Vet </i>43, 307-312 (2011)</b></p>     <p align="right"><strong>COMUNICACIÓN</strong></p>     <p align="justify">&nbsp;</p> </font></font>     <p align="left"><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Efecto    de tres ambientes de transporte sobre el tiempo de aparición de la autólisis    en muestras de alevines de trucha arcoíris (<i>Oncorhynchus mykiss</i>)</b></font></p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>Effect    of three transport conditions on the appearance time of autolysis in samples    of rainbow trout fry (<i>Oncorhynchus mykiss</i>)</strong></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>AR    Ortloff<sup> </sup></b><sup><a href="#a1">a</a><a href="#ar">*</a></sup><b>,    PA Peña </b><sup><a href="#a1">a</a></sup><b>, R Ildefonso</b></font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup><a name="a1"></a>a</sup>    Escuela de Medicina Veterinaria, Universidad Católica de Temuco, Temuco, Chile.    <br>   <a name="ar"></a>* Casilla 15 D, Temuco, Chile; <a href="mailto:aortloff@uct.cl"><u>aortloff@uct.cl</u></a>.</font></p> <hr size="1"> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b>SUMMARY</b></p>     <p align="justify">The aim of this work was to compare three types of transport    conditions on the appearance and progress of autolytic changes in samples of    dead fry sent to be processed for histopathological analysis. 300 whole fry    corpses were subjected to three transport conditions: submerged in water at    4 &deg;C, submerged in water at 15 &deg;C and dry atmosphere at 4 &deg;C. Every    hour from 0 to 24 hours, groups of 4 fry per condition were fixed in 10% formalin    and processed using the conventional hematoxylin and eosin stain technique (H&amp;E).    The appearance time of the autolytic changes in the different segments of the    kidney and liver were determined in each group, classifying the changes as early    autolytic, advanced autolytic and complete autolysis. It was observed that the    autolytic changes appeared first in the livers of the corpses at 4 &deg;C under    dry condition while last ones to be affected were the corpses submerged in water    at 4 &deg;C (1 and 6 hours, respectively). The first autolytic changes appeared    in the kidneys of the corpses at 4 &deg;C in the dry atmosphere and the last    in the corpses submerged in water at 4 &deg;C (3 and 9 hours, respectively).    It was concluded that out of the three transport conditions studied, the one    preserving for longer the histological and cytological structure of the fish    tissue for histological analysis was water preservation at 4 &deg;C, demonstrating    the key role of the temperature and atmospheric humidity in the progress of    fish autolysis.</p>     <p align="justify"><i><strong>Key words</strong>: </i>rainbow trout, autolysis,    histology.</p> </font></font> <hr size="1"> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><strong>RESUMEN</strong></font></p> </font></font>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El    objetivo de este trabajo fue comparar el efecto de tres tipos de ambiente de    transporte sobre el tiempo de aparición y progreso de los cambios autolíticos    de muestras de alevines muertos, enviados para ser procesados para análisis    histopatológico. Para ello se depositaron 300 cadáveres de alevines completos    en tres ambientes de transporte: sumergidos agua a 4 &deg;C, sumergidos agua    a 15 &deg;C y ambiente seco a 4 &deg;C. Cada una hora, desde el tiempo cero    hasta las 24 horas, grupos de 4 alevines por ambiente fueron fijados en formalina    al 10% y procesados con la técnica histológica convencional de hematoxilina&amp;eosina.    En todos los grupos se determinó el tiempo de aparición de los cambios autolíticos    en los distintos segmentos del riñón e hígado, clasificándose en cambios autolíticos    tempranos, avanzados y autólisis completa. Se observó que los cambios autolíticos    se evidencian primero en los hígados de los cadáveres a 4 &deg;C en ambiente    seco y al último en los cadáveres sumergidos en agua a 4 &deg;C (1 y 6 horas,    respectivamente). Respecto al riñón, los primeros cambios autolíticos se presentaron    en cadáveres a 4 &deg;C en ambiente seco y al último en los cadáveres sumergidos    en agua a 4 &deg;C (3 y 9 horas, respectivamente). De este estudio se concluye    que de los tres ambientes de transporte comparados, el que conserva por más    tiempo la estructura histológica y citológica de los tejidos de los peces para    análisis histológico es la conservación sumergidos en agua a 4 &deg;C, evidenciando    el rol clave de la temperatura y humedad ambiental en el progreso de la autólisis    de peces.</font></p>     <p><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><i><strong>Palabras    clave</strong>: </i>trucha arcoíris, autólisis, histología.</font></font></font><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">    </font></font> </p> <hr size="1"> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">      <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3"><strong>INTRODUCCIÓN</strong></font></p>     <p align="justify">En acuicultura se realizan muestreos de tipo sanitario, epidemiológico    y productivo. Los muestreos sanitarios consisten en la extracción y envío de    muestras de peces enfermos (moribundos) o sanos a los laboratorios para el diagnóstico    de enfermedades. Debido a las grandes distancias entre los laboratorios y los    centros de cultivo es frecuente que en el traslado de las muestras muchos peces    mueran, comenzando inmediatamente con el proceso de autólisis de los tejidos.    Una de las técnicas diagnósticas usadas en la acuicultura es el análisis histopatológico    de peces enfermos, siendo fundamental conocer si las alteraciones tisulares    observadas corresponden a lesiones propias de una enfermedad o corresponden    a cambios autolíticos producidos en los peces que han muerto en el trayecto    (Tomita y col 2004).</p>     <p align="justify">La investigación histológica juega un rol importante en el    examen post mórtem para dilucidar la causa y mecanismo de muerte y/o lesiones.    En este contexto, al momento de evaluar deben tenerse en consideración los cambios    autolíticos dependientes de condiciones ambientales como temperatura y humedad    (Janssen 1984, Tomita y col 2004). Los cambios post mórtem en los peces habitualmente    siguen cuatro etapas: el <i>rigor mortis</i>, la resolución del mismo, autólisis    y la descomposición bacteriana. Estas etapas se producen con mayor o menor rapidez,    dependiendo de la especie, el estado fisiológico de los peces, la contaminación    microbiana y la temperatura (Ayala y col 2010, Ocaño-Higuera y col 2009).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">La autólisis celular es el proceso de desintegración que comienza    luego de producida la muerte y en el cual no existe participación de bacterias,    dependiendo sólo de la acción de las enzimas celulares (Trezza 2006). La autólisis    de tejido normal producida en un individuo muerto se diferencia de la necrosis    producida en individuos vivos, debido a que la primera es difusa y no involucra    a células inflamatorias (Tomita y col 1999, 2004). En la autólisis, la secuencia    de eventos que se generan comienza con el déficit celular de oxígeno, produciendo    daños irreversibles en la estabilidad de la membrana celular, en la síntesis    de proteínas, la cadena respiratoria celular y en el material nuclear. La desestabilización    estructural de las membranas celulares y de sus organelos genera profundos cambios    en el intercambio iónico y de fluidos, los que adicionados a los cambios hidroelectrolíticos    y del pH celular alteran progresivamente las estructuras de los organelos citoplasmáticos,    generando la liberación de enzimas hidrolíticas al citoplasma conllevando la    digestión de los distintos constituyentes celulares. Este proceso depende de    diversos factores como el tipo de tejido y la condición nutricional previa del    sujeto, entre otros (Trezza 2006).</p>     <p align="justify">En mamíferos se han descrito la morfología y la ultraestructura    de los cambios post mórtem producidos bajo distintas condiciones de temperatura    para diversos órganos (Ilse y col 1979, Andersson y Collins 1983, El-Shennawy    y col 1985, Cingolani y col 1994, Tomita y col 1999). En el caso de los peces    se han realizado varios estudios que evalúan los cambios post mórtem, específicamente    en el músculo esquelético, por ser este órgano de interés comercial (Caballero    y col 2009, Ocaño-Higuera y col 2009, Ayala y col 2010). Sin embargo, no existen    estudios que determinen y caractericen en el tiempo, bajo condiciones controladas,    la aparición del proceso de autólisis en órganos de interés sanitario.</p>     <p align="justify">Este estudio comparó tres condiciones ambientales de transporte    de alevines, analizando histológicamente el tiempo de aparición de los procesos    autolíticos en tejido renal y hepático.</p>     <p align="justify"><font size="3"><strong>MATERIAL Y MÉTODOS</strong></font></p>     <p align="justify">MATERIAL BIOLÓGICO</p>     <p align="justify">Se utilizaron 300 alevines de trucha arcoíris (<i>Oncorhynchus    mykiss</i>) con un peso promedio de 1 gr adquiridos de una piscicultura ubicada    en Región de La Araucanía (Chile), la cual presentaba mortalidades promedio    de 0,01%/día. Los ejemplares fueron mantenidos en el laboratorio de Ictiopatología    de la Universidad Católica de Temuco en estanques de fibra de vidrio, bajo las    mismas condiciones de cultivo relacionados con la densidad (20 kg/m<sup>3</sup>),    temperatura del agua (10 &deg;C) y horas/luz (24 horas). Los peces fueron mantenidos    en aclimatación durante 24 h, tiempo en el cual se mantuvieron en ayuno. Posterior    a la aclimatación, se procedió a extraer los peces de forma individual, realizando    la eutanasia mediante contusión cerebral aguda. Las muestras se distribuyeron    en tres grupos según las distintas condiciones ambientales de transporte estudiadas.</p>     <p align="justify">CONDICIONES AMBIENTALES DE TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN</p>     <p align="justify">Se compararon tres condiciones ambientales de transporte de    muestras de alevines sin fijar: (i) Alevines muertos sumergidos en agua de la    piscicultura mantenidos a 4 &deg;C, (ii) alevines muertos sumergidos en agua    de la piscicultura a temperatura ambiente constante de 15 &deg;C y (iii) alevines    muertos almacenados sin agua (seco) en ambiente refrigerado a 4 &deg;C. Las    condiciones ambientales (i) y (iii) fueron conservadas a 4 &deg;C en un refrigerador,    con monitoreo de la temperatura por medio de un termómetro de máxima y mínima,    asegurándose que la temperatura se mantuviera constante y con una fluctuación    de &plusmn; 1 &deg;C durante todo el experimento. Las tres condiciones intentan    recrear situaciones de transporte de muestras en terreno, y se basaron en los    siguientes criterios: i) 4 &deg;C es la temperatura en la que frecuentemente    están los equipos de refrigeración, por lo que es probable que al momento de    enviar muestras desde el centro de cultivo hasta el laboratorio se procure mantener    esta temperatura mediante el uso de hielo y otro elemento que mantenga el frío    en el transporte. ii) 15 &deg;C es la temperatura ambiental promedio a la que    se mantiene el agua cuando es transportada sin un medio refrigerante (esto fue    registrado empíricamente transportando agua de una piscicultura en buses de    servicio regular de encomienda), por lo que representa otra condición probable    de transporte en la práctica cuando no se cuenta con hielo u otro elemento que    mantenga el frío. iii) 4 &deg;C sin agua (en seco) es una condición de transporte    utilizada para enviar muestras cuando las empresas de encomienda no aceptan    transportar medios líquidos, por lo que las muestras son transportadas en seco    y con elementos de enfriamiento.</p>     <p align="justify">OBTENCIÓN DE MUESTRAS, PROCESAMIENTO Y CRITERIOS DE ANÁLISIS</p>     <p align="justify">Para cada condición descrita anteriormente se extrajeron cuatro    alevines (cuadruplicado) al tiempo cero (controles) y cada hora hasta la hora    24. A los cuatro cadáveres de alevines de cada muestreo se les realizó una incisión    en la región ventral para favorecer la penetración de la solución fijadora (formalina    tamponada al 10%), siendo mantenidos en contenedores rotulados durante 48 h.    Una vez fijados todos los cadáveres, fueron procesados simultáneamente mediante    técnica histológica convencional (Kiernan 2008). Durante el proceso de inclusión,    los cadáveres de alevines fueron orientados longitudinalmente, a fin de obtener    secciones histológicas que permitan la observación de todos los órganos ubicados    medial y paramedialmente. Para esto se seleccionaron tres cortes de 5 <font size="3" face="Times New Roman, Times, serif">µ</font>m    de grosor (uno medial y dos paramediales) que en conjunto tenían secciones de    hígado, riñón, estómago, intestinos y ciegos pilóricos. Los cortes fueron montados    en portaobjetos y teñidos con tinción convencional de hematoxilina y eosina.    De cada corte histológico se analizó hígado completo (superficie en contacto    con pared abdominal y cara medial en contacto con estómago) y riñón (región    anterior, media y posterior). Se analizaron la preservación de la arquitectura    histológica del órgano, las características citoplasmáticas y nucleares de los    hepatocitos, de las células epiteliales de los túbulos contorneados, tejido    hematopoyético y eritrocitos. Como signo de autólisis se consideró: (i) el incremento    de la eosinofilia citoplasmática, (ii) presencia de núcleos con cromatina condensada,    o con cariólisis, (iii) tumefacción del citoplasma y (iv) pérdida del detalle    estructural de las células, así como de sus límites nuclear y citoplasmático.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Se definieron arbitrariamente tres estados de autólisis: i)    <i>Autólisis temprana: </i>en riñón, se caracterizó porque la mayoría de los    túbulos contorneados distales y proximales cortados transversalmente presentaban    hasta cuatro células con núcleo con cromatina condensada y/o cariorrexis, aumento    de la eosinofilia citoplasmática si se comparaba con las vecinas, se mantenía    la unión entre las células epiteliales tubulares y la arquitectura del órgano    se conservaba, reconociéndose las unidades estructurales y funcionales. En el    hígado se analizó en aumento 100X y este estado se caracterizó por la presencia    de eritrocitos con núcleo con cromatina condensada y hemólisis, y menos del    15% de los hepatocitos por campo con núcleo con cromatina condensada, cariorrexis    y/o cariólisis y eosinofilia citoplasmática. Los límites citoplasmáticos de    los hepatocitos se mantenían definidos. ii) <i>Autólisis avanzada</i>: en riñón    se caracterizó porque la mayoría de los túbulos contorneados distales y proximales    cortados transversalmente presentaban más de cuatro núcleos con cromatina condensada    y/o con cariorrexis, aumento de la eosinofilia citoplasmática y pérdida de la    unión entre células epiteliales. Los límites citoplasmáticos se mantenían definidos.    En hígado se caracterizó porque más del 15% de los hepatocitos tenían cambios    nucleares y citoplasmáticos autolíticos, sin embargo fue posible reconocer los    límites citoplasmáticos que definían un hepatocito. iii) <i>Autólisis completa:    </i>en el riñón se caracterizó por la severa distorsión de la arquitectura histológica,    reconociéndose sólo vestigios de las principales estructuras renales. No fue    posible reconocer células individualmente, las cuales aparecieron como estructuras    eosinófilas amorfas. Las células del tejido hematopoyético se reconocieron,    pero no fue posible su caracterización e identificación. El hígado se caracterizó    por la severa distorsión de la arquitectura histológica, reconociéndose sólo    vestigios de las principales estructuras hepáticas. En la mayoría de los cortes    no fue posible reconocer en detalle hepatocitos individualmente, los cuales    aparecieron como estructuras eosinófilas amorfas, con restos basófilos que correspondían    al núcleo.</p>     <p align="justify">ANÁLISIS DE LAS MUESTRAS HISTOLÓGICAS</p>     <p align="justify">El análisis de las muestras histológicas fue realizado con    un microscopio marca Olympus modelo BX-41, las imágenes fueron capturadas con    una cámara marca Jenoptik modelo ProgRes C3, y el análisis de imágenes se realizó    con el software ProgRes&reg; Mac CapturePro 2.7.6. El análisis de las imágenes    consistió en la identificación y el conteo de núcleos con cambios autolíticos    para clasificar a la muestra dentro de los tres estados de autólisis.</p>     <p align="justify"><font size="3"><strong>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</strong></font></p>     <p align="justify">En el <a href="#c1">cuadro 1</a> se presentan los distintos    tiempos de aparición de los cambios autolíticos en riñón e hígado en los tres    tratamientos.</p>     <p align="justify">&nbsp;</p> </font></font> <table width="300" border="0" align="center" cellpadding="0" cellspacing="0">   <tr>      <td>    <div align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><b><a name="c1"></a>Cuadro          1. </b>Tiempo de aparición de los cambios autolíticos tempranos, avanzados          y autólisis completa entre los tres ambientes de transporte: sumergidos          agua a 4 &deg;C (A); sumergidos agua a 15 &deg;C (B); ambiente seco a          4 &deg;C (C).    <br>         Appearance time of the early and advanced autolytic changes and complete          autolysis in the three transport atmospheres: submerged water at 4 &deg;C          (A); submerged water at 15 &deg;C (B); dry atmosphere at 4 &deg;C (C).</font></font></div></td>   </tr>   <tr>      <td>&nbsp;</td>   </tr>   <tr>      <td><img src="/fbpe/img/amv/v43n3/art15-cuadro01.jpg" width="681" height="366"></td>   </tr> </table> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">     
<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify">RI&Ntilde;ÓN</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Se observaron diferencias en cuanto a los tiempos de aparición    de los cambios autolíticos entre las tres regiones del riñón. Independiente    de la condición ambiental evaluada, en las regiones media y posterior del riñón    los cambios autolíticos se presentaron en el mismo período de tiempo, a diferencia    del riñón anterior, cuyos cambios autolíticos aparecieron una hora antes, patrón    que se repitió en las tres condiciones ambientales (<a href="#c1">cuadro 1</a>).    Las características morfológicas de los tres períodos de autólisis que se <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">definieron    para el riñon pueden observarse en la <a href="#f1">figura 1</a>: <i>autólisis    temprana </i>(<a href="#f1">figura 1a, d, g</a>), <i>autólisis avanzada </i>(<a href="#f1">figura    1b, e, h</a>) y <i>autólisis completa </i>(<a href="#f1">figura 1c, f, i</a>).</font></font><font size="2">    </font></p> </font><font size="2">      <p align="justify">&nbsp;</p> </font></font> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">  </font></font> <table width="300" border="0" align="center" cellpadding="0" cellspacing="0">   <tr>      <td><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="f1"></a><img src="/fbpe/img/amv/v43n3/art15-figura01.jpg" width="680" height="522"></font></td>   </tr>   <tr>      <td>&nbsp;</td>   </tr>   <tr>      <td>    
<div align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Figura          1. </b>Cortes histológicos de la región anterior de riñones de alevines          de trucha arcoíris. <b>a, d, g: </b>Cambios autolíticos tempranos de alevines          mantenidos sumergidos en agua a 4 &deg;C (8 h), sumergidos en agua a 15          &deg;C (5 h) y en ambiente seco a 4 &deg;C (2 h), respectivamente. Túbulo          contorneado con estructura histológica conservada, célula epitelial con          eosinofilia citoplasmática y núcleo con concentración de la cromatina          (flecha). Inserto: riñón fijado inmediatamente después de la muerte (control).          <b>b, e, h: </b>Cambios autolíticos avanzados de cadáveres de alevines          mantenidos sumergidos en agua a 4 &deg;C (14 h), sumergidos en agua a          15 &deg;C (11 h) y en ambiente seco a 4 &deg;C (8 h), respectivamente.          Aumento en el número de células con núcleo con su cromatina concentrada          (flecha) y desprendimiento de células epiteliales tubulares, desorganizando          parcialmente la estructura histológica renal. <b>c, f, i: </b>Autólisis          completa de cadáveres de alevines mantenidos sumergidos en agua a 4 &deg;C          (17 h), sumergidos en agua a 15 &deg;C (14 h) y en ambiente seco a 4 &deg;C          (11 h), respectivamente. Estructura histológica está completamente alterada,          las células aparecen como estructuras eosinófilas amorfas sin detalle          ni límite citoplasmático definido. (H&amp;E); Escala: 20 <font size="3" face="Times New Roman, Times, serif">µ</font>m.    <br>         Histological cuts of rainbow trout fry kidneys. <b>a, d, g: </b>Early          autolytic changes in fry corpses maintained submerged in water at 4 &deg;C          (8 h), submerged in water at 15 &deg;C (5 h) and in a dry atmosphere at          4 &deg;C (2 h), respectively. Convoluted tubuli with histological structure          preserved, epithelial cell with cytoplasmic eosinophilia and nucleus with          concentration of chromatin (arrow). Insert: Kidney fixed immediately after          death (control). <b>b, e, h: </b>Advanced autolytic changes in fry corpses          maintained submerged in water at 4 &deg;C (14 h), submerged in water at          15 &deg;C (11 h) and in a dry atmosphere at 4 &deg;C (8 h), respectively.          Increase in the number of cells with nucleus with its chromatin concentrated          (arrow) and detachment of tubular epithelial cells, partially disrupting          the histological structure of the kidney. <b>c, f, i: </b>Complete autolysis          in fry corpses maintained submerged in water at 4 &deg;C (17 h), submerged          in water at 15 &deg;C (14 h) and in a dry atmosphere at 4 &deg;C (11 h),          respectively. Histological structure is completely altered, the cells          appear as amorphous eosinophilic structures with no detail or defined          cytoplasmic limit. (H&amp;E); Scale: 20 <font size="3" face="Times New Roman, Times, serif">µ</font>m.</font></div></td>   </tr> </table> <font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2">     <p align="justify">&nbsp;</p>     <div align="justify">        <p align="justify">HÍGADO</p>       <p align="justify">En la región medial del hígado, que está en estrecho contacto      con el estómago, los cambios autolíticos aparecen aproximadamente una hora      antes si se compara con otras regiones del mismo órgano (para comparar los      tiempos, ver <a href="#c1">cuadro 1</a>). Este patrón se repitió en las tres      condiciones ambientales. Las características morfológicas de los tres períodos      de autólisis que se definieron para el hígado pueden observarse en la <a href="#f1">figura      1</a>: <i>autólisis temprana </i>(<a href="#f2">figura 2a, d, g</a>), <i>autólisis      avanzada </i>(<a href="#f2">figura 2b, e, h</a>) y <i>autólisis completa </i>(<a href="#f2">figura      2c, f, i</a>).</p>       <p align="justify">&nbsp;</p>       <div align="justify">      <table width="300" border="0" align="center" cellpadding="0" cellspacing="0">       <tr>          <td><a name="f2"></a><img src="/fbpe/img/amv/v43n3/art15-figura02.jpg" width="680" height="515"></td>       </tr>       <tr>          <td>&nbsp;</td>       </tr>       <tr>          <td>    
]]></body>
<body><![CDATA[<div align="justify"><font face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><font size="2"><b>Figura              2. </b>Cortes histológicos de región lateral de hígados de alevines              de trucha arcoíris. <b>a, d, g: </b>Cambios autolíticos tempranos              de cadáveres de alevines mantenidos sumergidos en agua a 4 &deg;C              (6 h), sumergidos en agua a 15 &deg;C (3 h) y en ambiente seco a 4              &deg;C (1 h), respectivamente. Cromatina concentrada en núcleo de              eritrocitos (flecha) y leve tumefacción de los hepatocitos. La estructura              histológica está conservada. Inserto: hígado fijado inmediatamente              después de la muerte (control). <b>b, e, h: </b>Cambios autolíticos              avanzados de cadáveres de alevines mantenidos sumergidos en agua a              4 &deg;C (21 h), sumergidos en agua a 15 &deg;C (15 h) y en ambiente              seco a 4 &deg;C (6 h), respectivamente. Aumento en el número de células              con eosinofilia citoplasmática, núcleo con cromatina concentrada (flecha)              y/o agregación de la cromatina en el borde del núcleo. Pérdida parcial              de la estructura histológica hepática. <b>c, f, i: </b>Autólisis completa              de cadáveres de alevines mantenidos sumergidos en agua a 4 &deg;C              (24 h), sumergidos en agua a 15 &deg;C (18 h) y en ambiente seco a              4 &deg;C (9 h), respectivamente. Estructura histológica completamente              alterada, la mayoría de las células aparecen como estructuras eosinófilas              amorfas sin detalle ni límite citoplasmático definido. (H&amp;E);              Escala: 20 <font size="3" face="Times New Roman, Times, serif">µ</font>m.    <br>             Histological cuts of rainbow trout fry livers. <b>a, d, g: </b>Early              autolytic changes in fry corpses maintained submerged in water at              4 &deg;C (6 h), submerged in water at 15 &deg;C (3 h) and in a dry              atmosphere at 4 &deg;C (1 h), respectively. Erythrocytes with nuclear              concentration of chromatin (arrow), slight swelling of hepatocytes              with histological structure preserved. Insert: Liver fixed immediately              after death (control). b, e, h: Advanced autolytic changes in fry              corpses maintained submerged in water at 4 &deg;C (21 h), submerged              in water at 15 &deg;C (15 h) and in a dry atmosphere at 4 &deg;C (6              h), respectively. Increase in the number of cells with citoplasmic              eosinopfilia with its nuclear chromatin concentrated (arrow) and/or              aggregation of chromatin in the nuclear border, partially disrupting              the histological structure of the liver. <b>c, f, i: </b>Complete              autolysis in fry corpses maintained submerged in water at 4 &deg;C              (24 h), submerged in water at 15 &deg;C (18 h) and in a dry atmosphere              at 4 &deg;C (9 h), respectively. Histological structure is completely              altered, the cells appear as amorphous eosinophilic structures with              no detail or defined cytoplasmic limit. (H&amp;E); Scale: 20 <font size="3" face="Times New Roman, Times, serif">µ</font>m.</font></font></div></td>       </tr>     </table>   </div>       <p align="justify">&nbsp;</p>       <div align="justify">Se observó que los cambios autolíticos, tanto en hígado      como riñón, se presentaron primero en los cadáveres de alevines que fueron      mantenidos a 4 &deg;C en ambiente seco, seguido por el grupo de alevines mantenidos      sumergidos en agua a temperatura ambiente de 15&deg;C. El grupo que mantuvo      por más tiempo la integridad histológica fue el de los cadáveres mantenidos      sumergidos en agua a 4 &deg;C.</div>       <p align="justify">Estos resultados podrían explicarse en parte porque la temperatura      ambiental influye directamente en la temperatura corporal de los peces. Cuando      la temperatura es baja, el pH se mantiene elevado por más tiempo y el metabolismo      celular disminuye, resultando en una autólisis más lenta (Berka 1986, Gunn      2009). Complementariamente a la temperatura se debe considerar el efecto que      posee la sumersión en agua o humedad de las muestras. Para muestras sumergidas,      la descomposición es dos veces más lenta que si estuvieran expuestas al aire,      debido a que el oxígeno es necesario en los procesos oxidativos de la descomposición,      siendo la concentración menor en el agua que en el aire (Dent y col 2004,      Gunn 2009). Si bien el fenómeno de descomposición es diferente a la autólisis,      ambos procesos ocurren casi en forma simultánea, especialmente en cuerpos      de menor superficie en ambientes con abundante flora bacteriana saprófita,      y los efectos de uno de estos fenómenos influyen sobre el desarrollo del otro.      Posiblemente en las muestras del ambiente frío y seco el efecto del ambiente      aerobio predominó sobre el efecto retardante de la temperatura baja, aumentando      la velocidad de descomposición y autólisis de las muestras. Adicionalmente      se observó que el proceso de autólisis comienza antes en el tejido hepático      y riñón anterior que en el tejido renal medio y posterior. Esto podría explicarse      por la estrecha relación anatómica topográfica entre el hígado (región medial)      y riñón anterior con el estómago, el cual se observó desintegrado y con su      contenido libre por lo menos una hora antes de que se observaran los primeros      cambios tanto en hígado como en riñón. Esto facilitaría la autólisis y descomposición,      especialmente en las regiones con mayor contacto debido a la actividad química      y enzimática del contenido gástrico post mórtem (Trezza 2006). En este mismo      contexto, el riñón se mantiene por más tiempo aislado anatómicamente del aparato      digestivo por medio de la vejiga natatoria, impidiendo momentáneamente el      contacto con las enzimas digestivas de los jugos gástricos en las primeras      etapas post mórtem, las cuales aceleran los procesos de descomposición y autólisis.</p>       <p align="justify">De acuerdo con los resultados de este estudio se concluye      que, para condiciones de terreno en las que no se disponga de métodos químicos      de fijación de tejidos, las muestras de alevines vivos, agónicos o muertos      destinadas a análisis histopatológico se transporten sumergidos en agua a      4 &deg;C, siendo fijados al llegar al laboratorio de análisis antes de los      tiempos de autólisis descritos en el <a href="#c1">cuadro 1</a>.</p>       <p align="justify"><font size="3"><strong>REFERENCIAS</strong></font></p>       <!-- ref --><p align="justify">Andersson B, VP Collins. 1983. <i>Post mortem</i>, ultrastructural      cardiac muscle changes and anthracycline toxicity. <i>Biomed Pharmacother      </i>37, 281-287.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500001&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Ayala MD, I Abdel, M Santaella, C Martínez, MJ Periago, F      Gil, A Blanco, O Albors. 2010. Muscle tissue structural changes and texture      development in sea bream, <i>Sparus aurata </i>L., during post-mortem storage.      <i>LWT-Food Science and Technology </i>43, 465-475.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500002&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Berka R. 1986. The transport of live fish. A review. <i>EIFAC      Tech Pap </i>48, 52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500003&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Caballero M, M Betancor, J Escrig, D Montero, A Espinosa      de los Monteros, P Castro, R Ginés, M Izquierdo. 2009. <i>Post mortem </i>changes      produced in the muscle of sea bream (<i>Sparus aurata</i>) during ice storage.      <i>Aquaculture </i>291, 210-216.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500004&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Cingolani M, A Osculati, A Tombolini, A Tagliabracci, C Ghimenton,      SD Ferrara. 1994. Morphology of sweat glands in determining time of death.      <i>Int J Legal Med 107</i>, 132-140.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500005&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Dent BB, SL Forbes, BH Stuart. 2004. Review of human decomposition      processes in soil. <i>Environ Geol </i>45, 576-585.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500006&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">El-Shennawy IE, DJ Gee, SR Aparicio. 1985. Renal tubular      epithelia ultrastructure in autolysis. <i>The J Pathol </i>147, 13-21.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500007&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Gunn A. 2009. <i>Essential forensic biology</i>. 2<sup>nd</sup>      ed. Wiley-Blackwell, Oxford, UK, Pp 424.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500008&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Ilse G, K Kovacs, N Ryan, E Horvath, D Ilse. 1979. Autolytic      changes in the rat adenohypophysis. A histologic, immunocytologic and electron      microscopic study. <i>Exp Pathol (Jena) </i>17, 185-195.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500009&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Janssen W. 1984. <i>Forensic histopathology</i>. Springer-Verlag,      Berlin, Alemania, Pp 402.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500010&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Kiernan JA. 2008. <i>Histological and Histochemical Methods:      Theory and Practice</i>. 4<sup>th</sup> ed. Scion Publishing Ltd., Oxfordshire,      UK, Pp 576.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500011&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Ocaño-Higuera V, E Marquez-Ríos, M Canizales-Dávila, F Castillo-Yáñez,      R Pacheco-Aguilar, M Lugo-Sánchez, K García-Orozco, AZ Graciano-Verdugo. 2009.      <i>Postmortem </i>changes in cazon fish muscle stored on ice. <i>Food Chemistry      </i>116, 933-938.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500012&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Tomita Y, M Nihira, Y Ohno, S Sato. 1999. Histological study      of early postmortem changes in various organs: comparison of the paraffin      embedding method and the epoxy resin embedding method. <i>Jpn J Legal Med      </i>53, 207-217.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500013&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Tomita Y, M Nihira, Y Ohno, S Sato. 2004. Ultrastructural      changes during in situ early postmortem autolysis in kidney, pancreas, liver,      heart and skeletal muscle of rats. <i>Legal Med </i>6, 25-31.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500014&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p>       <!-- ref --><p align="justify">Trezza F. 2006. <i>Data de la muerte: las transformaciones      cadavéricas</i>. Dosyuna Ediciones Argentinas, Buenos Aires, Argentina, Pp      256.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S0301-732X201100030001500015&pid=S0301-732X2011000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --></p> </div> </font></font>      <p>&nbsp;</p> <hr align="right" width="30%" size="1">     <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado:    07.04.2011</font></p>     <p align="right">&nbsp;</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[ ]]></body><back>
<ref-list>
<ref id="B1">
<nlm-citation citation-type="journal">
<person-group person-group-type="author">
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